Правила взятие патматериала

Взятие материала для лабораторных исследований

После вскрытия трупов животных для подтверждения предварительного диагноза болезни проводят бактериологическое, вирусологическое, гистологическое, химическое и другие лабораторные исследования. Для этого при вскрытии отбирают соответствующий патологический материал, который направляют в ветеринарные лаборатории.

Для бактериологического исследования патологический материал берут как можно раньше после смерти животного, особенно и теплое время года, так как материал от разложившегося трупа для исследования не пригоден.

Патологический материал для бактериологического исследования отправляют в лабораторию в неконсервированном виде. Если же нет возможности доставить его в лабораторию в течение суток, то патологический материал консервируют в 30-50% — ном водном растворе химически чистого глицерина. Количество консервирующей жидкости должно быть в 4-5 раз больше объема патологического материала.

Материал для вирусологического исследования необходимо брать от вынужденно убитых животных или от трупов не позже, чем 1-1,5 часа после смерти.

Его направляют в замороженном виде в термосе со льдом. Также консервируют 30-50%-ным водным раствором химически чистого глицерина на изотоническом (0,9-ном) растворе натрия хлорида.

Трупы небольших животных (поросят, ягнят, телят, птицы) посылают целыми в непроницаемой таре с нарочным.

Для гистологического исследования от свежих трупов павших или вынужденно убитых животных из разных участков патологически измененных органов и тканей вырезают тонкие кусочки длиной и шириной 1-2 см, толщиной не более 1 см, помещают их в стеклянные с 10%-ным водным раствором формалина (10 мл продажного формалина на 90 мл воды).

Объем консерванта берут в 10 раз больший, чем объем взятого материала. В формалине его фиксируют в течение 2-5 суток, причем жидкость через сутки с начала фиксации заменяют свежей. В зимнее время фиксацию проводят в теплом помещении.

На банку, где консервируют кусочки органов, наклеивают ярлык с указанием номера или клички животного, внутрь опускают этикетку из плотной бумаги с теми же надписями простым карандашом или шариковой ручкой. Если в одну посуду помещают несколько кусочков от разных животных, то каждый из них завязывают в марлю вместе с отдельной этикеткой.

Для химико-токсикологического исследования в лабораторию направляют в отдельных стеклянных или глиняных банках часть пищевода и желудка с содержимым (0,5 кг), отрезки тонкого и толстого кишечника (40 см длиной, 0,5 кг), перевязанные с обоих концов, часть печени (0,5 кг) с желчным пузырем, почку, мочу (0,5 л), скелетные мышцы (0,5 кг). Взятый материал не обмывают водой, не консервируют и отправляют с нарочным в опечатанных банках.

На посылаемый патологический материал составляется сопроводительный документ по определенной форме. В запечатанном конверте его посылают вместе с материалом с нарочным или почтой. В сопроводительном письме указывают вид, пол и возраст животного, от которого взят материал, его номер или кличку, количество банок с материалом, на какое исследование посылается, кратко описывают клинические признаки и патологоанатомические изменения. К письму могут быть приложены дополнительные сведения.

xn--80ahc0abogjs.com

Правила взятие патматериала

Цель занятия. Научиться правильно отбирать патматериал для гистологического исследования.

Содержание. Гистологическое исследование является важным, а иногда решающим в постановке диагноза. Его проводят в тех случаях, когда на основании эпизоотической ситуации, клинических признаков, картины вскрытия, бактериологического и других исследований установить диагноз невозможно.

Патматериал берут из разных мест подлежащих исследованию органов и тканей от свежих трупов или только что убитых животных в чистую, сухую стеклянную или реже глиняную посуду.

Площадь кусочков органов и тканей, отбираемых для гистоисследования, не должна превышать 1-2 см2, толщина — 1 см. Из каждого органа берут 3-4 кусочка, мелкие органы берут полностью. При наличии видимых невооружённым глазом изменений в органах или тканях кусочки вырезают на границе так, чтобы в них попали измененные и неизмененные участки. Обязательно’ надо взять кусочки органа с капсулой. Головной мозг можно брать полностью (целиком) или вырезать кусочки с учетом особенностей заболевания центральной нервной системы. Почки, надпочечники, яичники надо брать так, чтобы попали корковый и мозговой слои.

Отобранный патматериал сразу же помешают в фиксирующую жидкость, количество которой должно быть в 10-15 раз больше, чем патматериала. На дно банки предварительно помещают слой ваты для равномерного пропитывания патматериала. Если патматериал в день взятия не отправлен в лабораторию, то через 24 часа фиксирующую жидкость сменяют. Смену фиксирующей жидкости осуществляют необходимое число раз до завершения процесса фиксации, о чём судят следующим образом. Один из кусочков разрезают поперёк, если при этом вся поверхность разреза окажется равномерного серо-белого цвета, то фиксация завершена, если центр кусочка имеет розовый цвет, то смену жидкости продолжают с суточным интервалом необходимое число раз. Следует помнить, что при фиксации в формалиновом растворе патматериал хранят в темном месте или в темной посуде.

Для гистоисследования можно направить целые трупы, органы или. их части в нефиксированном виде. В таком случае должна быть обеспечена быстрая доставка их в лабораторию.

1. Раствор формалина 10%-ной концентрации. Это наиболее распространенная, недорогая и универсальная фиксирующая жидкость. Раствор готовят на водопроводной или колодезной воде. Для приготовления 1 литра раствора берут 100 мл 40%-ного — формалина и 900 мл воды.

Лучше, пользоваться нейтральным формалином. Способ его приготовления: к 1 л продажного формалина добавляют 100-200 г молотого мела или углекислой магнезии. Полученный раствор в течение первого дня несколько раз перемешивают. Затем дают отстояться, после чего формалин готов для приготовления нейтрального раствора.

2. Ацетон или спирт с эфиром поровну. Эти вещества применяют для фиксации материала при необходимости исследования на бешенство. Формалиновая фиксация для этой цели непригодна.

3.Спирт-ректификат 96°-ный является универсальной фиксирующей жидкостью, которую можно применять во всех случаях. С целью экономии спирта кусочки патматериала берут размером 5x5x5 мм.

Во избежание промерзания материала при перевозке в зимнее время его необходимо хорошо профиксировать на месте, затем переложить в жидкость для транспортировки: 30-50%-ный раствор глицерина, приготовленный на 10%-ном растворе формальна или 70°-ного спирта.

Профиксированныи на месте патматериал можно пересылать в емкости меньшего размера. Фиксирующую жидкость и патматериал в таком случае можно брать в соотношении 1:3-5, а не 1:10-15, как это требуется для фиксации свежего патматериала. Правила упаковки и пересылки патматериала для

Патматериал для гистоисследования можно направлять по почте и нарочным. В свежем (нефиксированном) виде патматериал направлять только с нарочным. В том и другом случае патматериал надо обязательно тщательно упаковывать, лучше в стеклянную посуду или в полиэтиленовую пленку (но не в мешочек, который может разорваться по шву). Затем уложить в деревянный или металлический ящик, приняв при этом все меры предосторожности против разрыва пленки и рассеивания возбудителей болезней во внешней среде. Упаковка должна гарантировать доставку патматериала в целости. На верхней стороне ящика делает— надпись: «Осторожно — стекло», «Верх».

При отсутствии полиэтиленовой пленки материал можно упаковывать в клеенку, брезент, холст, мешковину, смоченные креолином, лизолом или другим дезинфицирующим раствором.

При пересылке фиксированного или консервированного патматериала емкость герметически закрывают пробкой (стеклянной, резиновой, пробковой или деревянной). Пробку закрепляют тонкой проволокой или шпагатом и заливают сургучом или смолой, воском, парафином, менделеевской замазкой. На банки с кусочками органов и тканей наклеивают этикетки с указанием номера иго: клички животного, внутрь банки кладут этикетку из ватмана или картона, полотна с написанным тушью или простым (не химическим) карандашом номером животного.

В банку лучше брать патматериал от одного животного. Если берут от нескольких животных в одну банку, то кусочки от каждого животного с этикеткой (номером) завязывают в кусочки марли. Банки устанавливают в ящик и плотно обкладывают их ваток или паклей, бумагой, опилками, стружками, соломой, чтобы они не разбились при транспортировке. Ящик закрывают и опечатывают.

Профиксированный на месте патматериал для пересылки можно пересылать в лабораторию без использования посуды. Для этого его следует обложить ватой, смоченной фиксирующей жидкостью, тщательно завернуть в клеенку, а затем упаковать в ящик.

Если надо пересылать целые органы или их куски толщиной более 3 см, то для лучшего проникновения фиксирующей жидкости следует сделать на органах разрезы и вложить туда вату.

Кости упаковывают в полиэтиленовую пленку или целлофан, клеенку, марлю, ткань, смоченные в каком-либо дезинфицирующем растворе.

При пересылке нефиксированного патматериала от животных, болевших особо опасными болезнями (сибирская язва, бешенство, шумящий карбункул, бруцеллез, чума, инфекционная анемия, туляремия, ящур) должна соблюдаться особая осторожность. Такой патматериал помещают э герметически закрываемую емкость. Крышку укрепляют, заливают сургучом или другим веществом. Емкость устанавливают в металлический ящик (коробку), который необходимо запаять, опломбировать или опечатать, а затем металлический ящик поместить в деревянный и сделать надпись: «Осторожно — стекло», «Верх». Если такой материал отправляют с нарочным, то герметически закрытые банки можно тщательно упаковывать в деревянный ящик без металлической коробки.

К посылаемому патматериалу прилагают сопроводительный документ на упаковку материала и протокол вскрытия трупа или осмотра убитого животного.

В сопроводительной на упаковку указывают, какой патматериал направлен, сколько, в какой посуде, какая фиксирующая жидкость использована, род упаковки. Один экземпляр сопроводительной отправляют запечатанным в конверт вместе с патматериалом, а второй остается у отправителя. В случае обнаружения в лаборатории или на кафедра несоответствия упаковки, количества патматериала с данными сопроводительного документа или обнаружения порчи патматериала составляется акт. Копия такого акта отсылается отправителю патматериала.

Примерная форма сопроводительного документа к патматериалу направленному для гистоисследования

Сопроводительная

(указать куда направляется патматериал, адрес)

При этом направляем для гистологического исследования патматериал

(какой, сколько, из каких органов)

(вид животного, кличка, инвентарный номер)

Принадлежащего (ей) _____________________________________________________________

(название хозяйства, отделения, фермы или Ф. И.О. владельца животного и его адрес)

Дата заболевания животного (число, месяц, год)

Дата падежа или убоя животного (число, месяц, год)

Предположительный диагноз или предположительная причина гибели

Род упаковки патматериала (какие ёмкости, сколько, чем укреплены и залиты пробки или крышки, какая тара)

Фиксирующая жидкость (название и концентрация)

На какое заболевание требуется провести гистоисследование

Дата отправки патматериала (число, месяц, год)

Кто направил патматериал (Ф. И.О., должность, адрес отправителя)

Примерная схема краткого протокола вскрытия трупа или осмотра убитого животного

Краткий протокол №___________

Мы,_______________________________________________________________________нижеподписавшеся (Ф. И.О., должность, место работы вскрывавшего труп и присутствующие при этом)

Произвели вскрытие трупа (осмотр убитого(ой)_______________________________________

(число, месяц, год)

(область, район, село, хозяйство, отделение)

Вид животного, кличка, порода, возраст, инвентарный номер___________________________

(название и адрес организации или Ф. И.О. и адрес владельца).

Данное животное заболело(число, месяц, год)________________________________________

Пало или убито(число, месяц, год)__________________________________________________

Клинические признаки и продолжительность болезни (если вскрывающий не наблюдал клинические признаки, то должен выписать их из истории болезни или со слов ухаживающего персонала, владельца)_____________________________________________________________

Производилось ли лечение и его эффективность. Когда и какие проводились предохранительные прививки. Применялись ли антибиотики лечебные, кормовые____________________

Прижизненный диагноз, результаты лабораторного исследования у данного животного _____

Далее указывается количество животных в хозяйстве по видам, состояние кормления и содержания, ухода, эксплуатации, эпизоотологического состояния хозяйства, района в настоящее время и прошлом: когда и какие были эпизоотии, кокой был отход животных данного вида, когда началось данное заболевание, какие животные и в каком возрасте преимущественно болеют и погибают. Приводят цифровые данные о ходе заболевания по дням: с павших, вынужденно убитых и больных.

Патологоанатомическая картина

Описывают все измененные органы и ткани, указывают при этом их форму, вес, размер (длину, ширину, толщину а сантиметрах), состояние краев (острые, притуплены, тупые), оболочки (гладкие, блестящие, бугристые, шероховатые, сморщенные, тусклые), цвет с поверхности и на разрезе, состояние стенок сосудов, кишечника, желудка и других полостных органов; на разрезе (сухой или сочный, выраженность рисунка, соскоб — слабый, умеренный или обильный) и т. д.

При наличии в органах и тканях кровоизлияний, некрозов, участков дистрофии, абсцессов и т. п. указывают их количество, локализацию, размер и форму, на какую глубину они проникают, выраженность краев (четкие, нечеткие); консистенцию органон (твердая, плотная, упругая, эластичная, тестообразная, дряблая), рисунок ткани в очаге поражения.

Неизмененные органы не описывают, а указывают: «В остальных органах макроскопических изменений не установлено» или «Остальные органы в пределах нормы».

Правила изготовления влажных патологоанатомических музейных препаратов.

Материал надо брать от свежих трупов или недавно убитых животных. Органы, ткани или их части берут с наиболее выраженными изменениями. Материал нельзя загрязнять содержимым желудочно-кишечного тракта, кровью и т. п., в случае загрязнения его надо тщательно обтереть чистым тампоном. Обмывать водой не рекомендуется.

Если орган крупных размеров, то для быстрейшего проникновения фиксирующей жидкости вовнутрь (органа или ткани) можно сделать надрезы на его тыльной стороне, не представляющей интереса для демонстрации. В случае необходимости здесь же делают небольшое окошечко, через которое острой ложкой можно выскоблить часть ткани. Образовавшуюся пустоту заполняют ватой и помещают орган в фиксирующую жидкость. Можно также фиксирующую жидкость вводить вглубь органа или ткани в разные места при помощи шприца и длинной иглы или через естественные ходы — сосуды, бронхи, молочные каналы и т. д.

Если интерес представляет одна из сторон органа, можно сделать пластинчатый препарат с толщиной среза 3-4 см.

Фиксирующей жидкости должно быть в 10 раз больше, чем патматериала.

Полостные органы — мочевой и желчный пузыри, матку, кишечник и другие после удаления содержимого заполняют гигроскопической ватой, смоченной той же фиксирующей жидкостью.

Для демонстрации слизистой оболочки орган выворачивают, заполняют ватой, смоченной фиксирующей жидкостью. Такие органы можно разрезать по длине, затем прикрепить к дощечке или фанере, картону, стеклу при помощи ниток или булавок и после этого поместить в фиксирующую жидкость.

Для сохранения формы какого-либо полого органа, его полости заполняют ватой или марлей или вставляют распорки. После уплотнения и фиксации органа или трупа материалы, применяемые для придания формы, удаляют.

При изготовлении музейных препаратов с сохранением окраски (кровоизлияния, участки гиперемии, дистрофии, некрозы или натурального цвета органа) применяют различные методики.

Жидкость для фиксации:

Вода водопроводная 1000мл

Хлорид калия 5г

Ацетат калия или натрия 30г

Формалин продажный 100мл

Жидкость для восстановления цвета:

Спирт ректификат 85-90-градусный

Жидкость для хранения препарата:

Вода водопроводная прокипяченная 1000мл

Ацетат калия или натрия 400г

Жидкость для фиксации:

Вода водопроводная 1000мл

Ацетат калия 30г

Азотнокислый калий 15г

Формалин продажный 200мл

Жидкость для восстановления цвета:

Спирт ректификат 90-градусный

Жидкость для хранения препарата:

Вода водопроводная 900мл

Ацетат калия 200г

Жидкость для фиксации:

Вода дистиллированная 1000мл

Карловарская соль 50г

Формалин продажный 600мл

Жидкость для восстановления цвета:

Спирт ректификат 80-85 градусов

Жидкость для хранения препарата:

Вода дистиллированная 1000мл

Ацетат калия или натрия 300г

Жидкость для фиксации и сохранения цвета:

Вода водопроводная 1000мл

Карловарская соль 50г

Насыщенный раствор хлоралгидрата на дистиллированной воде 50мл

Формалин продажный 50-100 мл

Жидкость для хранения препарата:

Вода водопроводная 1000мл

Ацетат калия или натрия 300г

Можно вместо третьей жидкости Мельникова-Разведенкова и второй жидкости Иоресса применять для хранения препарата жидкость Тизенгаузена:

Вода водопроводная 1000 мл

Хлорид натрия 200 г

Калийная селитра 10 г

В эту жидкость желательно добавлять немного камфары кристаллической или тимола.

Время фиксации в жидкости зависит от размера органа. Продолжительность фиксации кишечника, мочевого пузыря, оболочек мозга (если они не утолщены) в пределах одних суток. Более крупные органы требуют большего времени для фиксации — 3-5 и более суток.

Орган считается профилированным в том случае, если он на всю глубину имеет одинаковый сероватый цвет (как и на поверхности) и при надавливании из разреза не вытекает красноватая жидкость.

После того, как орган профилируется, его переносят по методу Иоресса в жидкость для хранения, а по методу Мельникова-Разведенкова, Кайзерлинга, Пика — в спирт для восстановления первоначального цвета.

Время восстановления цвета органа в спирте — определяется опытным путем (от 20 минут до нескольких часов) и зависит от продолжительности фиксации. Сразу после восстановления первоначального цвета орган перекосят в жидкость для хранения.

Если требуется восстановить цвет крупного органа, то с целью экономии спирта его помещают в кювету и покрывают тонким слоем гигроскопичной ваты, смоченной спиртом. Вату периодически приподнимают, определяя момент восстановления первоначального цвета.

После восстановления естественного цвета орган или ткань помещают в банку с жидкостью для хранения. Банку герметически закрывают. Крышку вырезают из обычного или органического стекла и приклеивают замазкой Менделеева-Шора, клеем БФ-2, БФ-4 или др. Замазка Менделеева продается в зооветснабах и аптеках в готовом виде. Ее можно готовить и самостоятельно. Для этого в металлической посуде расплавляется 125 г желтого пчелиного воска. Затем небольшими порциями добавляется 500 г канифоли, 200 г краски-мумии прокаленной и 3-5 мл льняного или другого масла при постоянном помешивании. После этого вся масса варится на слабом огне при легком помешивании до исчезновения пены. Готовая замазка должна быть одинаковой по окраске У Густоте. Она переливается в металлическую посуду, в которой хранится и разогревается при необходимости ее использования.

Состав замазки Шора (г): гуттаперчи — 100, смолы черной — 200, асфальта — 200, сала несоленого — 200, канифоли — 400. В случае получения очень сухой консистенции надо уменьшить количество канифоли.

Для запечатывания банок лучше пользоваться замазкой Менделеева. Она влагоустойчива и хорошо удерживает крышку, которую при необходимости можно снять, что легко сделать горячим ножом или скальпелем.

Перед закрыванием просушивают края банки, разогревают замазку, в нее быстро погружают края крышки, удерживая её наклонно. Затем крышку быстро накладывают на банку, слегка прижимают и сверху кладут небольшой груз. После прикрепления крышки проверяют герметичность, для чего банку осторожно наклоняют на бок и проверяют не подтекает ли жидкость.

Если сохранение естественной окраски органа или ткани не обязательно, то их можно хранить в 10%-ном растворе формалина.

Этикетка к патологоанатомическому музейному препарату (примерный образец) ЭТИКЕТКА

(название, вид, возраст животного)

(указать, какой патологический процесс, какое заболевание)

Кто изготовил препарат______________________________________________________

( фамилия, имя, отчество, курс, группа)

(отделение — очное, заочное)

Дата изготовления_____________(число, месяц, год)

Тема: Смерть, посмертные изменения. Некроз. Гангрена.

Препарат №1. Смешанные посмертные сгустки крови в сердце.

Макрокартина. Сердце на разрезе. Правая и левая половины сердца заполнены блестящими, эластичной консистенции сгустками крови темно-красного и серо-белого цвета с гладкой поверхностью, легко извлекающимися из полостей сердца.

Микрокартина. Темно-красная часть сгустка состоит из эритроцитов, лейкоцитов и нитей фибрина, серо-белая — из нитей фибрина и лейкоцитов.

Наличие во всех сердечных полостях смешанных сгустков крови свидетельствует о том, что агония была длительной смерть наступила в результате остановки сердца.

Заключение. Посмертное изменение — смешанные сгустки крови а сердце.

Дифференциальная диагностика. От прижизненных тромбов

Препарат №2. Сухие некрозы в печени.

Макрокартина. С поверхности . Правая доля печени клиновидной формы, размером 11x10x3,5 см, края притуплены, капсула умеренно напряжена. Цвет печени темно-коричневый, неравномерный с наличием серо-желтых участков различной формы, размером от 0,1 до 2 см с четкими, извилистыми краями, уплотненной консистенции.

На разрезе . Поверхность разреза органа сухая, ровная; цвет поверхности темно-коричневый с наличием участков серо-желтого цвета различной формы размером от 0,1 до 2 см с четкими извилистыми краями, с сухой поверхностью, стертым рисунком.

Микрокартина. Серо-желтые участки — это бесструктурная масса, состоящая из окрашенной цитоплазмы и хроматина ядер, образовавшихся в результате пикноза и рексиса.

Патологоанатомический диагноз. Сухие ареактивные некрозы печени.

Этиология. Недостаток или прекращение кровоснабжения (тромбоз, эмболия, спазм сосудов, сдавливание опухолью, конкрементами, закупорка паразитами, воспаление>; нарушение центральной или периферической нервной системы, инфекции, интоксикация, лучевая радиация и др.

Дифференциальная диагностика. От зернистой и жировой дистрофии, абсцессов, паразитарных узелков, гранулематозного пролиферативного воспаления, туберкулезных узелков, опухолей.

Препарат №3. Инкапсулированные некрозы в печени.

Макрокартина. С поверхности . Поперечно срезанный фрагмент печени свиньи треугольной формы, размером 12×5,5×3,5 см; капсула напряжена, поверхность бугристая. Цвет печени неравномерный, серо-коричневый, с наличием участков округлой формы, размером от 0,3 до_ 2 см в диаметре, серо-белого цвета, выступающих над поверхностью органа, уплотненной консистенции.

На разрезе . Поверхность разреза органа сухая, рисунок стерт; цвет серо-коричневый с наличием участков овальной формы, размером от 0,3 до 2 см в диаметре с четкими, ровными краями, серо-белого цвета, крошковатой консистенции, со стертым рисунком. Вокруг отдельных очагов располагается серая, плотная, волокнистая ткань — соединительнотканная капсула. В центре некоторых очагов видны крупинки белого цвета, твердой консистенции — известь.

Микрокартина. Серо-белые участки представляют собой безъядерную, бесструктурную массу с глыбками хроматина, ограниченную от основной части органа соединительнотканной капсулой.

Патологоанатомический диагноз. 1.Инкапсулированные сухие некрозы печени. 2.Зернистая дистрофия печени.

Этиология. Недостаток или прекращение кровоснабжения (тромбоз, эмболия, воспаление, спазм сосудов, сдавливание опухолью или конкрементами, паразитами), нарушение центральной или периферической нервной системы, инфекции, интоксикации, лучевая радиация.

Дифференциальная диагностика. От зернистой и жировой дистрофии, абсцессов, паразитарных узелков, гранулематозного пролиферативного воспаления, туберкулезных узелков, опухолей.

Препарат №4. Секвестр в легком.

Макрокартина. С поверхности . Некротический участок легкого, овальной формы размером 14x8x4 см, серо-белого цвета, уплотненной консистенции.

На разрезе . Вокруг этого участка видна мощная соединительнотканная капсула; по периферии — омертвевшая ткань, местами подвергшаяся гнойному расплавлению, отслоилась от окружающей капсулы. Между некротическим участком и капсулой находится жидкость.

Микрокартина. Некротический участок представляет собой бесструктурную массу с большим количеством глыбок хроматина кариорексис, кариопикноз). По периферии некротического участка располагается зона из нейтрофильных лейкоцитов, со стороны сохранившейся легочной ткани — мощная соединительнотканная капсула, между ними находится экссудат.

Патологоанатомический диагноз.. Секвестр в легком.

Этиология: Инфекционные, инвазионные заболевания, интоксикации, расстройства кровообращения, заболевания нервной системы, аллергия.

Дифференциальная диагностика. От опухолей, инкапсулированных некрозов.

Препарат №5. Сухая гангрена кожи и проксимального конца плюсневой кости.

Макрокартина. С поверхности . Скакательный сустав жеребенка гнедой масти покрыт кожей и шерстью. 1/3 часть плюсневой кости глубиной на 2-4 мм, 1/3 костного мозга и края кожи по всей окружности конечности неровные, шероховатые, тусклые, твердые, сухие, от темно-коричневого до черного цвета.

Остаток сохранившейся плюсневой кости имеет шероховатую поверхность с округлым 3×2,5×0,5 см углублением. Дно углубления пористое, шероховатое, желто-белого цвета.

Поверхность отпила большеберцовой кости ровная, желто-белого цвета, сухая.

Микрокартина. Ядра и цитоплазма клеток кожи и кости в этом участке в состоянии пикноза и рексиса (сухой некроз).

Патологоанатомический диагноз. Сухая гангрена кожи и проксимального конца плюсневой кости. Мутиляция нижнего отдела конечности.

Этиология. Недостаток или прекращение кровоснабжения при тромбозе, эмболии, опухолях, воспалении, спазмах; нарушение центральной или периферической нервной системы; инфекционных заболеваниях (например, некробактериоз, лептоспироз), лучевая радиация, ожоги, отморожение, отравление спорыньей, пролежни.

Дифференциальная диагностика. От травм, ожогов, пролежней.

Препарат №6. Мумификация плода (сухая гангрена).

Макрокартина. Плод крупного рогатого скота 19x9x9 см в плодных оболочках в возрасте 4,5-5 месяцев; твердый, сухой консистенции, темно-коричневого цвета. На наружной плодной оболочке (хорионе) видны котиледоны (участки скопления ворсинок). Микрокартина. Клетки всех органов и тканей уменьшены в размерах, но с сохранившейся структурой.

Патологоанатомический диагноз. Мумификация плода (сухая гангрена) .

Этиология и патогенез. После воздействия патогенного фактора (бруцеллез, хламидиоз, микотоксикоз, травма и др. > наступил аборт — прерывание развития плода, но в силу низкой сократительной способности матки плод изгнан не был и задержался в ней на длительное время. При наличии слизистой пробки беременности в шейке матки, стерильных условий и высокой всасывающей способности стенки матки погибший плод мумифицировался (сухая гангрена) и остался в полости матки.

Дифференциальная диагностика. От новообразований

chitalky.ru

Правила отбора и доставки проб патматериала в лабораторию

Главная > Документ

Правила отбора и доставки проб патматериала в лабораторию.

Во всех случаях взятия и пересылки материала специалист обязан руководствоваться изложенными ниже правилами, а также соответствующими инструкциями по борьбе с болезнями животных.

Взятие и пересылка патологического материала для бактериологического и

Патологический материал необходимо брать стерильными инструментами в стерильную посуду. Поверхность органа (ткани), от которого берут патологический материал, на месте разреза следует обжечь над пламенем или прижечь нагретой металлической пластинкой.

Патологический материал должен быть взят как можно раньше после смерти животного, особенно в теплое время года, т.к. сразу же после заболевания (или впервые же 1-2 дня) барьерная роль кишечника значительно ослабевает, что наряду с повышенной проницаемостью кровеносных сосудов способствует диссиминации кишечной флоры.

Кроме того, по мере углубления инфекционного процесса количество вируса может снижаться в результате одновременного воздействия защитных сил организма.

Следует учитывать, что при многих вирусных инфекциях наблюдается феномен посмертной аутостерилизации, в результате чего вирус может быть вообще не обнаружен или его количество окажется очень незначительным.

Вторая причина необходимости экстренного взятия материала – избежать посмертных изменений в тканях, иначе они могут оказаться непригодными для бактериологических и вирусологических исследований.

Для вирусологических исследований желательно направлять пробы от животных в трех стадиях болезни:

от больных с выраженной клиникой с указанием температуры, частоты пульса и дыхания (кровь, кость, лимфатические узлы и пораженные органы);

от убитых в агонии (кровь, кость, лимфатические узлы и пораженные органы);

от выздоравливающих животных (кровь).

Взятые пробы следует как можно быстрее поместить в условия, обеспечивающие замедление процессов разложения материала. Такие условия обеспечивают низкие температуры.

Если патологический материал невозможно доставить в лабораторию в течение ближайших 24-30 часов, его посылают только в консервированном виде.

Патологический материал (органы или их части) консервируют 30-50%-ным раствором химически чистого глицерина на физиологическом растворе. Физиологический раствор предварительно стерилизуют при 120 0 С в течение 30 мин.

Материал можно консервировать также в стерильном вазелиновом масле. Материал заливают консервирующей жидкостью в количестве 4-5 раз, превышающем его объем. Консервированные образцы желательно хранить в холодильнике.

Небольшие трупы (поросят, мелких животных можно посылать целиком во влагонепроницаемой таре).

Трубчатые кости посылают на исследование в целом виде, очищенными от мышц и сухожилий. Кости завертывают в марлю или полотно, смоченные дезинфицирующей жидкостью и пересылают в сейф — пакетах или в стерильных полиэтиленовых пакетах.

Кишечник перед посылкой для бактериологического и вирусологического исследований освобождают от фекальных масс, а концы кишечника перевязывают. На исследование посылают части кишечника с наиболее характерными патологическими изменениями.

Кишечник помещают в банки с 30%-ным водным раствором глицерина или насыщенным водным раствором поваренной соли. Объем консервирующей жидкости должен превышать объем взятого материала в 4-5 раз.

Кал для исследования отправляют в стерильных стаканах, пробирках, банках, которые закрывают пергаментной бумагой, пробками или в контейнерах.

Кал от трупов животных можно послать в отрезке невскрытого кишечника, завязанного с обоих концов, он должен быть доставлен в лабораторию не позднее 24 ч после его взятия.

Для исследования участков кожи берут наиболее пораженные ее кусочки размером 10×10 см и посылают в стерильной, герметически закупоренной посуде.

При взятии содержимого гигром (бурс) в области поражения выстригают шерсть, кожный покров дезинфицируют 70°-ным спиртом и обрабатывают 5%-ной настойкой йода. Затем стерильным шприцем с иглой большого диаметра делают пункцию, отсасывают содержимое гигромы и переносят его в стерильную пробирку с резиновой пробкой.

Перед взятием проб молока у коров вымя обмывают теплой водой, соски обрабатывают 70%-ным спиртом. Из каждой доли вымени берут последние порции молока по 10-15 мл в отдельные стерильные пробирки с резиновыми пробками.

У овец и коз пробы молока берут с помощью молочного катетера или путем пункции цистерны вымени. Для этого животное фиксируют в боковом положении, вымя у основания соска протирают 70%-ным спиртом или смазывают 5%-ной настойкой йода. Стерильным шприцем с иглой делают пункцию у основания соска. После попадания иглы в цистерну (о чем судят по свободному движению конца иглы) набирают в шприц молоко и переносят его в стерильную пробирку с резиновой пробкой.

Пробы мочи берут катетером в стерильную посуду. При его отсутствии мочу получают при естественном мочеиспускании или, вызывая последнее, раздражением наружных половых органов.

Пробы слизи из половых органов животных берут стерильным марлевым тампонам (см. приложение) при помощи специальных инструментов конструкции Павловского, Жавордова, Казеева, а также применяемых при искусственном осеменении коров шприца-катетера или полистироловой пипетки, соединенной со шприцем.

Для получения смывов слизистой оболочки носовой полости, половых органов, конъюнктивы и др. полость орошают стерильным физиологическим раствором или солевым раствором Хенкса (см. приложение) и собирают стекающий раствор в емкости.

Иногда для получения смывов в полость вводят стерильный ватный тампон, смоченный физиологическим или солевым сбалансированным раствором. Тампоном тщательно протирают слизистую, извлекают его и помещают во флаконы с аналогичным раствором.

Мазки из носа, полости рта, прямой кишки, клоаки у птиц и т.д. берут при помощи стерильных ватных тампонов на довольно длинных стерильных деревянных палочках. После взятия мазка тампон помещают в пробирку, заполненную соответствующей жидкостью.

Наиболее часто для этого используют реактив Хенкса с антибиотиками (пенициллин, стрептомицин, нистатин) и белковым стабилизатором, например с 0,5% желатина или 0,5-1% альбумина бычьей сыворотки.

Взятие и пересылка материала

для исследования на паразитарные заболевания

Для копрологического исследования на гельминтозы — пробы фекалий от крупного, мелкого рогатого скота и свиней (10 г) берут рукой в резиновой перчатке из прямой кишки от 10%-ного поголовья ферм, но не менее 30 проб от возрастной группы или от каждой дойной коровы. Пробы доставляют в лабораторию в целлофановых мешочках или пергаментной бумаге на краю которых ставят номер пробы, с сопроводительным документом, в котором указывают хозяйство (комплекс), отделение, цех, вид и количество животных в них, на какой гельминтоз исследовать и дату взятия проб. При направлении на исследование проб от коров номера (клички) на упаковке и в описи должны соответствовать. От трупов в лабораторию направляют содержимое тонкого кишечника.

От лошадей пробы фекалий берут от 5%-ного поголовья табуна, но не менее 25 проб.

Для прижизненной диагностики гельминтозов плотоядных в лабораторию направляют пробы свежих фекалий массой около 5 г отдельно от каждого животного, для посмертной – труп животного. Материал упаковывают во влагонепроницаемую тару и доставляют в лабораторию фекалии не позднее 24 часов после взятия, труп – не позднее 5 часов после гибели.

Для исследования на эхинококкоз, альвеококкоз в лабораторию направляют:

— от промежуточных хозяев (павших или убитых) — пораженные органы (печень, легкие, другие внутренние органы и ткани);

— от дефинитивных хозяев- пробы фекалий или тощую кишку с содержимым от павших или убитых животных.

Отобранный патологоанатомический материал упаковывают во влагонепроницаемую тару и доставляют в лабораторию в день отбора в течение 4-6 часов.

Для исследования на телязиоз в лабораторию направляют содержимое конъюктивального мешка, полученное после промывания из спринцовки 3%-ным раствором борной кислоты или физиологическим раствором. Отобранные пробы выливают в пробирки, закрывают резиновыми пробками и доставляют в лабораторию в день взятия.

Для исследования на акантоцефалезы в лабораторию направляют свежие фекалии (пробы берут от 10% поголовья свиней или от 5% поголовья птиц), содержимое кишечника от трупов свиней, трупы птиц целиком.

В лабораторию для исследования на эймериозы направляют:

— от 20-30 подозреваемых в заболевании животных из прямой кишки пробы фекалий до 5 г;

— от павших или вынужденно убитых – отрезки пораженных тонких и толстых кишок, перевязанные с обоих концов;

— от пушных зверей, кроликов и птиц – групповые пробы фекалий или трупы целиком.

Отобранный патологический материал и пробы фекалий упаковывают во влагонепроницаемую тару и доставляют в лабораторию в день отбора, а трупы – не позднее 4-6 часов после гибели.

Для исследования на трипанозомоз (случную болезнь) лошадей в лабораторию направляют: соскобы со слизистой оболочки влагалища, мочеиспускательного канала, взятые уретральной ложкой; выпот из надрезов отеков и бляшек, собранный шприцом в стерильные пробирки; для реакции связывания комплемента сыворотку крови нативную или консервированную одним из общепринятых методов. Патологический материал доставляют в термосе со льдом и исследуют не позднее 6 часов, а сыворотку крови – не позднее 2 дней после взятия. Для микроскопического исследования на месте (в хозяйстве) делают раздавленные капли из экссудатов и соскобов.

Для микроскопического исследования Су-ауру (трипанозомоз) лошадей, собак приготовляют мазки и толстые капли крови из уха. Для установления диагноза необходимо материал брать повторно. В лабораторию направляют (или исследуют на месте) сыворотку крови или цельную кровь для исследования методом постановки формолреакции. От трупа берут кусочки селезенки, печени, почек, костного мозга и лимфатических узлов, делают мазки и посылают в лабораторию. Мазки готовят не позже чем через 6-12 часов после смерти животного.

Для бактериологического исследования в лабораторию направляют:

а) от коров, нетелей и овцематок — абортированный плод (целиком с плодными оболочками), а от особенно крупных плодов -голову, желудок, печень, легкие, плаценту (или часть ее). В случае непригодности плода, плодовых оболочек и плаценты для исследований в лабораторию направляют слизь из шейки матки, стерильно взятую впервые 3-4 дня после аборта (при отсутствии гнойных выделений из матки) или в период охоты. Слизь берут также от животных, у которых наблюдают расстройство полового цикла (в период охоты);

б) от быков и баранов — препуциальную слизь, сперму секрет придаточных половых желез, взятые с соблюдением правил асептики и антисептики. При исследовании быков обработку полости препуция бактерицидными средствами прекращают за 30 дней до исследования;

в) от животных, убитых с диагностической целью, влагалище, матку, лимфатические узлы тазовой полости.

Для исследования в реакции агглютинации берут цервиковагинальную слизь неоднократно перегуливающих коров и телок, не имеющих выделений из влагалища (гноя, крови и т.п).

Патологический материал доставляют в лабораторию в закрытой таре со льдом.

При отправке абортированных плодов следует иметь в виду, что они пригодны для исследования впервые 10-12 ч после аборта. При необходимости плоды замораживают и отправляют не позднее чем через двое суток после аборта.

Пробы спермы, секрета, препуциальной и влагалищной слизи, полученные от животных, транспортируют в термосе со льдом и доставляют в лабораторию не позднее 6 ч с момента взятия проб.

Упаковка и пересылка патологического материала

Трупы мелких животных, части трупов животных и отдельные органы в свежем (нефиксированном) виде отправляют для исследования в лабораторию только с нарочным.

Посылаемый материал должен быть тщательно упакован, чтобы предупредить возможность рассеивания инфекции в пути.

Упаковка должна быть трехслойной:

1) емкость, содержащая пробу, должна быть водонепроницаемой, а в случае использования подвижных буферных растворов — герметичной;

2) внутренняя упаковка должна быть водонепроницаемой с достаточным количеством поглощающего материала на случай утечки для впитывания всей жидкости, содержащейся в пробе (вата, бумага);

3) наружная упаковка предназначена для защиты внутренней от физических повреждений и воды (герметичный термоконтейнер).

При перевозке наиболее надежным способом консервирования вируссодержащих проб является их замораживание. При транспортировке проб на дальние расстояния следует использовать сухой лед. В качестве емкости для материала и льда используют пластмассовые контейнеры, легкие по массе, с хорошей теплоизоляцией, небьющиеся и прочные.

Следует избегать колебаний температуры, особенно резких ее перепадов, а также повторных замораживаний и оттаиваний. Температура является определяющим фактором, влияющим на выживаемость вируса во время перевозки. Титр вируса снижается очень быстро, если температура среды, в которой его транспортируют, поднимается выше 20 0 С; у большинства вирусов это снижение происходит настолько быстро, что превращает последующее выделение вируса в пустую трату времени.

Если замораживание невозможно, то следует использовать один из следующих консервирующих растворов (см. приложение)

Кроме правильно выбранного материала, взятого в подходящие сроки и пересланного с соблюдением необходимых условий, лаборатория нуждается в определенной информации, касающейся больного и диагностических проб. Вместе с пробами направлять подробное описание динамики заболевания животного (время появления, быстрота охвата, процент заболеваемости, наличие летальных исходов или тяжелых осложнений, период переболевания, клиническая картина, протокол вскрытия, чем лечили, прививали).

На взятый материал составляют сопроводительный документ (см. приложение)

Если при вскрытии посылки в лаборатории обнаруживается несоответствие сопроводительному документу или порча патологического материала, то обязательно составляют акт, копию которого отправляют ветеринарному врачу, направлявшему материал в лабораторию.

Отбор проб мозга для исследования на бешенство

При подозрении на бешенство необходимо, когда это возможно, присылать целую голову, ее следует упаковать во влагонепроницаемый пакет, поместить в металлический контейнер и доставить в лабораторию в более короткие сроки.

Отбирать пробы мозга необходимо строго соблюдать меры личной безопасности: надевать резиновые перчатки, халаты с нарукавниками, резиновый или полиэтиленовый фартук, резиновые сапоги, защитные очки, защитную маску на лицо.

Отделить голову от туловища и хорошо зафиксировать. Снять кожу и мышцы с черепной коробки, сделав надрезы между глазными впадинами и от них в сторону затылка. С помощью пилы, топора, ножниц и пинцета снять черепную коробку. Отделить основные нервы, изъять мозг и поместить его на кювету или доску. Отобрать пробы коры больших полушарий и основания спинного мозга.

Для исследования на бешенство необходимо брать пробы аммоновых рогов. Для этого нужно рассечь продольными разрезами каждое центральное полушарие на расстоянии 2 см (для собак) от средней линии мозга, удалить верхние части до щели (пространства), в котором находятся аммоновы рога, представляющие собой полуцилиндрические тела белого цвета.

Нужно взять несколько кусочков аммоновых рогов и основания спинного мозга. Общий вес каждой пробы должен быть 5-10 г. Пробы мозга для исследования на бешенство обычно консервируют глицерином и маркируют с пометкой «бешенство».

Вскрывать подозрительных на заболевание бешенством животных в полевых условиях запрещено!

Отбор проб мозга при прионных инфекциях(губкообразная энцефалпатия крупного рогатого скота, скрепи овец и коз, трансмиссивная энцефалопатия норок)

При выполнении работ по отделению, упаковке и транспортировке головы необходимо исключить травмирование рук и попадание брызг крови на кожу и в глаза. Чтобы избежать этого, надевают халат, прорезиненный фартук, анатомические перчатки из плотной резины, резиновые сапоги, водонепроницаемый капюшон и защитную маску из оргстекла, закрывающую лицо от брызг крови.

Голову отделяют от шеи по атланто-затылочному сочленению. С дорсальной части головы крупного рогатого скота удаляют кожу.

Далее зажимают голову в тиски, осторожно, чтобы не повредить мозг, распиливают лобную кость с помощью анатомической пилы (см. в приложении рис: разрез 1).

Затем производят надрезы лобной кости с каждой стороны от точек, находящихся на оси глазных ям, продлевая их каудально до наружных слуховых проходов. Продлевая эти разрезы каудально до большого затылочного отверстия также осторожно, чтобы исключить повреждение мозга (см. в приложении рис: разрез 2)..

Делают сагиттальный разрез посередине лобной и затылочной костей до большого затылочного отверстия (см. в приложении рис: разрез 3). Затем разделяют и удаляют распиленные левую и правую части черепной коробки. Рассекают и снимают твердую мозговую оболочку.

Перевернуть голову, чтобы под действием силы тяжести мозг отделился от основания черепа. Продолжить работу, продвигаясь от каудального надреза вперед; для перерезания нервов вентральной стороны черепа использовать скальпель.

Извлечь мозг целиком и поместить его в ударопрочную герметичную емкость с фиксирующим раствором (см. приложение), при этом объем раствора должен быть в 10 раз больше объема мозга.

По окончании работ инструменты, которыми проводили отделение и распил головы, укладывают в стерилизатор с 2%-ным раствором гипохлорита натрия не менее чем на 1 час (инструменты должны быть погружены в раствор полностью). Сапоги, фартук, капюшон, маску и перчатки обрабатывают 2%-ным раствором гипохлорита натрия (протереть раствором, оставить на 1 час, затем тщательно вымыть водой), халаты обрабатывают автоклавированием при 134-138 0 С в течение 20-30 минут, Горючие отходы сжигают.

Отобранный материал необходимо доставить во Всероссийский научно-исследовательский институт защиты животных МСХ РФ по адресу: 600900 Владимир,

пос. Юрьевец, тел./факс (0922) 24-36-75 или в ГУ «Псковская областная ветеринарная лаборатория» по адресу: г. Псков, ул. Металлистов, 29

Африканская чума свиней отбирают трубчатую кость и селезенку доставляют в замороженном виде в термоконтейнере (0+4 0 С).

Классическая чума свиней отбирают трубчатую кость, селезенку, лимфоузлы доставляют в замороженном виде в термоконтейнере (0+4 0 С).

Взятие крови для серологических исследований

Иглы перед взятием крови обязательно стерилизуют кипячением. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригают, а кожу дезинфицируют 70%-ным спиртом.

Нужно следить, чтобы кровь стекала в пробирку струей, а не каплями, кровь, взятая каплями и вспененная, скорее гемолизуется и часто дает неправильные результаты при исследовании.

У лошадей, крупного рогатого окота, овец и коз кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

У свиней кровь берут из уха (иглой со шприцем), из кончика хвоста, из передней полой вены (лучше в спинном положении) или из глазной вены. Хвост предварительно обмывают водой с мылом и дезинфицируют 70%-ным спиртом. Затем кончик рассекают ножницами. После взятия крови кончик хвоста обрабатывают йодом, перевязывают или прижигают алюминевыми квасцами.

У птиц кровь берут из подкрыльцовой вены или из гребешка.

Кровь у лисиц и песцов берут из бедренной вены, у норок путем отсечения подушечки среднего пальца задней лапы: или кончика хвоста.

Брать кровь для получения сыворотки надо по возможности утром, до кормления животных. Для серологического исследования берут по 7-10 мл крови от крупного рогатого скота, лошадей, овец, свиней; от пушных зверей и птиц по 1-2 мл.

Сыворотку крови получают методом отстоя. Для свертывания крови и отстаивания сыворотки пробирки с кровью выдерживают 30-60 мин при 20-30°С или 37-38°С, сгусток крови от стенок отделяют стальной спицей, а затем пробирки выдерживают при 4-10°С 20-24 ч.

Отстоявшуюся сыворотку сливают в сухие стерильные пробирки, закрывают пробками и направляют в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

Мутные, проросшие, гемолизированные сыворотки исследованию не подлежат.

На каждой пробе крови или сыворотки указывают ее номер или кличку животного, или фамилию владельца животного.

Пробы направляют с сопроводительной в двух экземплярах (см.приложение)

Пробирки с кровью и сыворотками плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзли.

Взятие крови для гематологических исследований

Кровь для гематологических исследований берут из ярёмной или каудальной (хвостовой) вены в специальные системы забора крови с антикоагулянтом или в пробирки с антикоагулянтами. В качестве антикоагулянтов используют трилон Б (ЭДТА-динатриевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты) из расчета 0,1 мл 10 %-ного раствора на 1 мл крови, гепарин (5ед. на 1 мл крови) или 6%-ный раствор лимоннокислого натрия (0,1 мл на 1 мл).

Для предотвращения свертывания крови содержимое пробирки сразу же тщательно перемешивают. Стабилизированную кровь до исследования хранят в холодильнике при температуре 2-4 0 С и исследуют не позднее, чем через 36 часов с момента взятия.

Пироплазмидозы и анаплазмозы.

В лабораторию для подтверждения диагноза на пироплазмоз, тейлериоз, франсаиеллез, бабезиоз, нутталлиоз, анаплазмозы направляют:

— от подозреваемых в заболевании или больных животных — тонкие мазки крови из периферических сосудов уха, хвоста или венчика, на тейлериоз дополнительно – мазки из пунктатов лимфатических узлов;

— от павших или убитых – часть печени, легких, селезенки, почки, сердца, головного мозга и лимфатические узлы.

Мазки крови берут в период развития симптомов болезни, при повышенной температуре, до применения специфического лечения. Перед отбором материала у животного шерсть на месте взятия крови выстригают, кожу тщательно протирают в начале ватным тампоном, смоченным в 70%-ном растворе спирта, а затем сухим. Стерильной иглой делают прокол вены ушной раковины или ножницами надрезают край верхушки уха или хвоста.

К свободно выступившей капле крови легко прикасаются поверхностью сухого обезжиренного предметного стекла. Затем стекло быстро поворачивают вверх каплей и удерживают пальцами левой руки в горизонтальном положении. Шлифованным краем другого предметного стекла или покровного стекла прикасаются к капле крови. Как только кровь равномерно распределится по ребру этого стекла, его быстро проводят по поверхности стекла справа налево под углом 45°. Ширина мазка должна быть уже предметного стекла. Для каждого нового мазка берут свежую каплю крови. От каждого животного готовят 2 мазка. Готовые мазки крови высушивают на воздухе. В холодное время года мазки делают в теплом помещении или на стеклах, подогретых на крышке стерилизатора. Правильно приготовленные мазки крови должны быть тонкие, равномерные, достаточной длины и заканчиваться за 0,5-1,0 см от края стекла.

При взятии пунктата из лимфатического узла животное хорошо фиксируют, на месте пункции выстригают шерсть, кожу протирают ватным тампоном, смоченным в растворе спирта или настойке йода. Левой рукой оттягивают лимфатический узел и удерживают большим и указательным пальцами левой руки. Затем вглубь узла вводят стерильную иглу, надевают на нее шприц и поршнем отсасывают лимфу. После шприц отсоединяют, иглу извлекают, а содержимое шприца выдавливают поршнем на предметное стекло, делая тонкие мазки, которые высушивают на воздухе.

На высушенных мазках крови и пунктата острым предметом или простым карандашом пишут номер, вид животного и дату приготовления мазка.

Материал от павших или убитых животных отбирают до наступления трупного окоченения.

Мазки упаковывают в чистую бумагу и доставляют в лабораторию в день отбора.

Для исследования животных на чесотку (накожниковую, зудневую и кожеедную) в лабораторию для микроскопического исследования доставляют соскобы с кожи. Для обнаружения накожников и зудней берут соскобы со свежих, неуплотнившихся очагов поражения (не менее чем с 2-3 мест на границе между пораженной и здоровой кожей, а для обнаружения кожеедов – в центре поражения). Перед взятием соскобов вокруг очага поражения выстригают шерсть. Для исследования на зудневую чесотку берут глубокие соскобы до появления сукровицы. Взятый материал помещают в баночку, плотно закрывают крышкой и

этикетируют с указанием наименования хозяйства, фермы, отары, номера животного, даты взятия материала.

Для исследования на демодекоз в лабораторию направляют:

— содержимое 3-5 узелков диаметром от 1 до 18 мм, при отсутствии узелков – соскобы с кожи;

— от консервированных кож крупного рогатого скота, овец, коз и свиней – соскобы с пятен, расположенных в области головы, шеи, плеча, лопаток, боков, спины.

Перед отбором материала у крупного рогатого скота, овец, коз, свиней и собак выстригают волосяной покров вокруг узелков, дезинфицируют кожу 0,5%-ным раствором карболовой кислоты и делают кровопускательной иглой прокол узелка на глубину 1-3 мм. Пальцами захватывают узелок так, чтобы ранка была в центре, выдавливают сметанообразное содержимое, вытаскивают иглу и мандреном выталкивают содержимое из полости иглы в стеклянный флакон с 0,5 см 3 вазелинового, растительного масла или физиологического раствора и закрывают пробкой.

От животных, больных дерматомикозами (стригущий лишай, парша), патологический материал берут с периферии очагов поражения, не подвергавшихся медикаментозному лечению. Корочки с остатками волос, волосы выдергивают пинцетом из пораженных участков (по возможности менее загрязненных) и помещают в стеклянную баночку с крышкой. Образцы снабжают этикеткой с указанием области, района, хозяйства, возраста и степени поражения животного, а также даты взятия материала и доставляют для исследования в лабораторию.

Отбор и транспортировка рыб для бактериологического, вирусологического, паразитологического и химико-токсикологического исследования.

Больных или подозрительных по заболеванию инфекционными и инвазионными болезнями рыб доставляют в лабораторию в живом виде.

Для исследования отбирают 10-20 рыб с явно выраженными клиническими признаками болезни, согласно МУ по паразитологическому исследованию рыб № 044-3 от 31.01.90 г.

Рыб перевозят в чистых молочных бидонах, ваннах или других емкостях, предназначенных для перевозки живой рыбы, заполненных на 3/4 объема водой из того же

водоема, откуда взята рыба, или из артезианской скважины. Рыба, доставленная в лабораторию в бумаге, марле и др. упаковочных материалах, для исследования не пригодна. Летом при длительной транспортировке воду с рыбой постепенно охлаждают до температуры 12-15°С, добавляя кусочки льда. Чтобы не вызвать температурного шока и простудных явлений, нельзя пересаживать рыбу в воду, имеющую температуру ниже, чем в водоеме (на 7°С и более).

При отсутствии возможности доставить живую рыбу, у крупных рыб берут кусочки пораженных органов и тканей, помещают их в стерильную стеклянную посуду, заливают

стерильным 40%-ным водным раствором глицерина, закрывают пробкой, заливают парафином и направляют с нарочным в лабораторию. Жидкий патологический материал (кровь, экссудат и др.) доставляют в лабораторию в запаянных стерильных пастеровских пипетках.

Летом патологический материал пригоден для бактериологического исследования в течение 2 часов после его взятия.

Для исследования на инвазионные заболевания рыбу доставляют в живом или свежеуснувшем виде.

Для химико-токсикологических исследований в лабораторию доставляют живых или недавно погибших рыб, не менее 5 экземпляров каждого вида. Одновременно направляют рыб того же вида из благополучного водоема для контрольных исследований. Если доставить живых или свежеуснувших рыб невозможно, а также в теплое время года, рыб охлаждают на льду, промораживают.

материала от трупов павших и больных животных при подозрении на отравление.

При подозрении на отравление животных в лабораторию направляют материал от трупов павших животных для химических исследований. Одновременно с целью определения источника отравления посылают все корма (по 1 кг каждого вида корма), которые скармливали животному, с указанием периода скармливания каждого вида корма. Кроме этого, обязательно посылают остатки кормов из кормушки.

Для химических исследований в лабораторию посылают в отдельных банках следующий материал:

а) часть пищевода и пораженную часть желудка с содержимым (в количестве 0,5 кг), а от крупного и мелкого рогатого скота – часть пищевода и сычуга и содержимое из разных мест сычуга, рубца (по 0,5 кг).

Желудок и его содержимое берут в следующем порядке.

При вскрытии трупа после осмотра внутренних органов перевязывают лигатурами пищевод и двенадцатиперстную кишку вблизи стенки желудка (в двух местах по две перевязки) и перерезают между перевязками. Желудок извлекают и кладут в чистую стеклянную посуду (от крупных животных на чистое место), затем вскрывают его по передней стенке.

Содержимое желудка предварительно (не выбирая из желудка) перемешивают, после чего осторожно, чтобы не загрязнить, берут часть его. Для перемешивания нельзя использовать металлические предметы;

б) отрезок тонкого отдела кишечника (длиной до 0,5 м) из наиболее пораженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);

в) отрезок толстого отдела кишечника (длиной до 40 см) из наиболее пораженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);

г) часть печени (0,5-1 кг) с желчным пузырем (от крупных животных), а от мелких животных печень целиком;

е) мочу в количестве 0,5 л;

ж) скелетную мускулатуру в количестве 0,5 кг;

Кроме того, в зависимости от особенностей предполагаемого отравления дополнительно посылают:

при подозрении на отравление метгемоглобинобразующими ядами (нитритами, нитратами с их редукцией в нитриты, бертолетовой солью, красной кровяной солью и др.) — сгуски крови 10 мл;

при подозрении на отравление через кожу (in vivo) – часть кожи, клетчатки и мышцы из места предполагаемого введения яда;

при подозрении на отравление газами – наиболее полнокровную часть легкого (в количестве 0,5 кг), трахею, часть сердца, 200 мл крови, часть селезенки и головного мозга. От мелких животных (в том числе и от птиц) берут органы целиком.

При вскрытии отрытого из земли трупа животного надо взять: сохранившиеся внутренние органы в количестве до 1 кг, скелетную мускулатуру в количестве 1 кг, землю под трупом 0,5 кг из двух-трех мест.

Для гистологического исследования посылают небольшие кусочки, размером 1×3×5 см, следующих органов: печени, почек (обязательно с наличием коркового и мозгового слоев), сердца, легкого, селезенки, языка, пищевода, желудка, тонкого и толстого отделов кишечника, скелетной мускулатуры, лимфоузлов, головного мозга (половину мозга в стерильной банке).

Кусочки должны быть взяты из различных участков органов на границе пораженной и непораженной части ткани и тотчас же помещены в 10%-ный раствор формалина из расчета на 1 часть патологического материала 15 частей раствора формалина.

При подозрении на отравление веществами, употребляемыми для борьбы с сельскохозяйственными вредителями, минеральными удобрениями, зооцидами посылают пробу их в количестве от 100 до 1000 г. В случае отсутствия этих веществ на момент отправки в лабораторию необходимо в сопроводительных документах указать их название.

От больных животных при подозрении на отравление посылают: рвотные массы, желательно первые порции; мочу – все количество, которое удалось получить; кал – в количестве 0,5 кг; содержимое желудка, полученное через пищевой зонд; корма и вещества, которые могли явиться причиной отравления. При подозрении отравления нитратами, нитритами дополнительно посылают слюну, носовую слизь (сколько получается отобрать), цельную кровь (со стабилизатором) 10 мл.

При подозрении, что отравление наступило вследствие поедания ядовитых растений, берут для ботанического анализа пробы растений в следующем порядке: деревянную рамку с внутренним размером 1 м 2 накладывают на травостой луга или пастбища в местах выпаса скота; все оказавшиеся внутри рамки растения срезают под корень. Если травостой однотипный, пробу с 1 га луга или пастбища берут в 3-5 местах, а если травостой разнотипный, количество проб увеличивают с целью большего охвата различных растений и посылают среднюю пробу.

Если пробу трав, взятых для исследования, можно доставить в лабораторию в течение нескольких часов, то траву посылают в сыром виде; при длительной пересылке пробы сушат и доставляют в сухом виде. Пересылают пробы трав в коробках, но не в полиэтиленовых пакетах.

Пробы должны быть взяты ветеринарным специалистом или зоотехником.

Материал, взятый для химических исследований, нельзя обмывать и держать вместе с металлическими предметами; его отправляют в чистом, не консервированном виде.

Упаковывают материал в чистые, широкогорлые стеклянные банки, плотно закрывающиеся стеклянными притертыми пробками, а при отсутствии их – чистыми, не бывшими в употреблении полиэтиленовыми крышками или чистой вощеной бумагой.

Поверх крышки банку обертывают чистой бумагой, обвязывают тонким шпагатом (или толстой крепкой ниткой), концы которого приклеивают этикеткой с печатью организации и подписью специалиста, отобравшего материал. На каждую банку наклеивают еще этикетку, на

которой записывают, какие органы, и в каком количестве (по весу) помещены в банку, вид и кличку животного, дату падежа и вскрытия трупа животного, указывают, какое подозревается отравление и кому принадлежит животное.

Взятый материал должен быть отправлен в лабораторию немедленно с нарочным. При подозрении на отравление нитратами, нитритами, синильной кислотой патологический материал необходимо доставить в течение 2 часов после смерти животного.

gigabaza.ru

Смотрите так же:

  • Закон хмао-югры о мерах социальной поддержки Закон хмао-югры о мерах социальной поддержки Правительство Ханты-Мансийского автономного округа - Югры постановлением от 11 ноября 2017 года № 443-п "Об индексации размеров отдельных видов мер социальной поддержки, помощи и иных выплат" […]
  • Изменение размеров пособий на детей Изменении размера пособий на детей с 1 февраля 2018 года. 7 Февраля 2018, 13:37 Центр социальной защиты населения по Калачевскому районуинформирует о том ,что в соответствии с постановлением Правительства Российской Федерации от […]
  • Приказ 147 фмс декабрь 2014 Приказ Федеральной миграционной службы от 28 июня 2010 г. N 147 "О формах и порядке уведомления Федеральной миграционной службы об осуществлении иностранными гражданами трудовой деятельности на территории Российской Федерации" (с […]
  • С патентом в 2018г Патент на работу для иностранных граждан в 2018 году Патент на работу для иностранных граждан 2018 года: что он из себя представляет, как его приобрести и как устроиться в РФ на работу с патентом для граждан СНГ? В этой публикации мы […]
  • Страховка для ребенка на поездку Страхование детей Статистика страховых случаев показывает, что во время зарубежных поездок за медицинской помощью дети обращаются в 15 раз чаще взрослых. Самый большой процент обращений приходится на возрастную группу до 6 лет. В разные […]
  • Неуплата налогов на имущество физическим лицом Штраф за неуплату налога на имущество для физических лиц в 2018 году В жизни многих из нас случаются такие радостные события, как покупка квартиры, дома, дачи и т. д. Однако следует помнить о том, что за недвижимость, которая находится в […]

Обсуждение закрыто.